Для ускорения получения новых сортов мягкой пшеницы, накапливающих антоциановые соединения в зерне, ранее нами разработаны внутригенные ДНК-маркеры к регуляторным генам Pp и Ba, контролирующим биосинтез антоцианов в перикарпе и алейроновом слое зерновки соответственно. В настоящей работе эти маркеры совместно со сцепленными с целевыми микросателлитными маркерами апробированы при создании линий мягкой пшеницы на основе сорта Элемент 22 и селекционной линии BW49880, накапливающих антоцианы в перикарпе, алейроне и в обоих перечисленных слоях зерновки одновременно. В качестве доноров антоциановой пигментации использованы изогенные линии с окрашенными зерновками, созданные ранее на генетическом фоне сорта Саратовская 29. Оценено суммарное содержание антоцианов в цельнозерновой муке данных линий. Этот показатель зависел от генотипа, увеличиваясь в ряду: краснозерный < фиолетовозерный < голубозерный < чернозерный; за исключением фиолетовозерной линии, полученной на основе BW49880 (накапливающей одновременно Zn) и достоверно не отличавшейся от чернозерных линий. Обсуждается применение полученных линий в качестве перспективных доноров генов биосинтеза антоцианов для создания новых сортов пшеницы с повышенным содержанием антоцианов.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
Мягкую пшеницу (Triticum aestivum L., 2n = 42, геном BBAADD) в последнее время все чаще рассматривают в качестве функционального пищевого продукта, выступающего источником не только простых и сложных углеводов, а также белков, пищевых волокон, минералов и различных фенольных соединений, среди которых выделяется группа антоциановых соединений (Wang et al., 2020). В зерновках мягкой пшеницы антоциановые соединения могут накапливаться в перикарпе (плодовой оболочке) и алейроновом слое эндосперма.
Список литературы
1. Арбузова В.С., Бадаева Е.Д., Ефремова Т.Т., Осадчая Т.С., Трубачеева Н.В., Добровольская О.Б. Цитогенетическое изучение голубозерной линии мягкой пшеницы сорта Саратовская 29. Генетика. 2012;48(8):926-933. EDN: PANIDP
Arbuzova V.S., Badaeva E.D., Efremova T.T., Osadchaya T.S., Trubacheeva N.V., Dobrovolskaya O.B. A cytogenetic study of the blue-grain line of the common wheat cultivar Saratovskaya 29. Russian Journal of Genetics. 2012;48(8):785-791. DOI: 10.1134/S102279541205002X EDN: RFZHRX
2. Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Хлесткина Е.К. Способ отбора гибридов мягкой пшеницы с голубой окраской зерновки. Патент № 2790186, 01.06.2022.
Gordeeva E.I., Shoeva O.Yu., Khlestkina E.K. Method for the selection of the bread wheat hybrids with blue grain color. Patent No. 2790186, 01.06.2022. (in Russian).
3. Запрометов М.Н. Фенольные соединения. Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993.
Zaprometov M.N. Phenolic compounds. Distribution, metabolism and functions in plants. Moscow: Nauka Publ., 1993. (in Russian).
4. Коваль С.Ф. Каталог изогенных линий сорта мягкой пшеницы Новосибирская 67 и принципы их использования в эксперименте. Генетика. 1997;33(8):1168-1173. EDN: MOZBST
Koval’ S.F. The catalog of near-isogenic lines of Novosibirskaya-67 common wheat and principles of their use in experiments. Genetica (Moscow). 1997;33(8):995-1000.
5. Стрыгина К.В., Хлесткина Е.К. Структурно-функциональная организация и эволюция генов семейства WD40, участвующих в регуляции биосинтеза флавоноидов у представителей трибы Triticeae. Генетика. 2019;55(11):1350-1358. DOI: 10.1134/S0016675819110158 EDN: TRYDLO
Strygina K.V., Khlestkina E.K. Structural and functional organization and evolution of the WD40 genes involved in the regulation of flavonoid biosynthesis in the Triticeae tribe.Russian Journal of Genetics. 2019;55(11):1398-1405. DOI: 10.1134/S1022795419110152 EDN: RSQJSM
6. Хлесткина Е.К. Гены, детерминирующие окраску различных органов пшеницы. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2012;16(1):202-216. EDN: PASMTP
Khlestkina E.K. Genes determining coloration of different organs in wheat. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2012;16(1):202-216. (in Russian). EDN: PASMTP
7. Хлесткина Е.К., Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Кукоева Т.В., Шаманин В.П., Моргунов А.И. Способ отбора линий яровой мягкой пшеницы с повышенным содержанием антоцианов в зерне. Патент № 2762804 С1, 09.02.2021.
Khlestkina E.K., Gordeeva E.I., Shoeva O.Yu., Kukoeva T.V., Shamanin V.P., Morgunov A.I. A method of selection of the spring bread wheat lines with a high content of anthocyanins in the grain. Patent No. 2762804 C1, 09.02.2021. (in Russian).
8. Хлесткина Е.К., Шоева О.Ю., Гордеева Е.И. Гены биосинтеза флавоноидов пшеницы. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2014;18(4/1):784-796.
Khlestkina E.K., Shoeva O.Y., Gordeeva E.I. Flavonoid biosynthesis genes in wheat. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2014;18(4/1):784-796. (in Russian). EDN: TEGAZF
9. Шаманин В.П., Потоцкая И.В., Шепелев С.С., Пожерукова В.Е., Салина Е.А., Сколотнева Е.С., Ходсон Д., Хоумвёллер М., Патпур М., Моргунов А.И. Стеблевая ржавчина Западной Сибири - расовый состав и эффективные гены устойчивости. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2020;24(2):131-138. DOI: 10.18699/VJ20.608 EDN: TQOAQM
Shamanin V.P., Pototskaya I.V., Shepelev S.S., Pozherukova V.E., Salina Е.А., Skolotneva Е.S., Hodson D., Hovmøller M., Patpour M., Morgounov A.I. Stem rust in Western Siberia - race composition and effective resistance genes. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2020;24(2):131-138. 10.18699/VJ20.608. (in Russian). DOI: 10.18699/VJ20.608.(inRussian) EDN: TQOAQM
10. Шоева О.Ю., Гордеева Е.И., Хлесткина Е.К. Внутригенный ДНК-маркёр для отбора пшеницы с повышенным содержанием антоцианов в перикарпе зерновки. Патент № 2774444, 29.11.2021.
Shoeva O.Yu., Gordeeva E.I., Khlestkina E.K. An intragenic DNA marker for the selection of the wheat with an increased content of anthocyanins in the grain pericarp. Patent No. 2774444, 29.11.2021. (in Russian).
11. Юдина Р.С., Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Тихонова М.А., Хлесткина Е.К. Антоцианы как компоненты функционального питания. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021;25(2):178-189. DOI: 10.18699/VJ21.022 EDN: KAXCNZ
Yudina R.S., Gordeeva E.I., Shoeva O.Y., Tikhonova M.A., Khlestkina E.K. Anthocyanins as functional food components. Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2021;25(2):178-189. 10.18699/VJ21.022. (in Russian). DOI: 10.18699/VJ21.022.(inRussian) EDN: KAXCNZ
12. Abdel-Aal E.S.M., Hucl P. A rapid method for quantifying total anthocyanins in blue aleurone and purple pericarp wheats. Cereal Chem. 1999;76(3):350-354. DOI: 10.1094/CCHEM.1999.76.3.350
13. Abdel-Aal E.S.M., Hucl P., Shipp J., Rabalski I.Compositional Differences in Anthocyanins from Blue-and Purple-Grained Spring Wheat Grown in Four Environments in Central Saskatchewan. Cereal Chem. 2016;93(1):32-38. DOI: 10.1094/CCHEM-03-15-0058-R
14. Arbuzova V.S., Maystrenko O.I. Chromosomal location of genes for purple grain colour introgressed in common wheat. Cereal Res.Comm. 2000;28(3):235-237. DOI: 10.1007/BF03543599 EDN: LFZVCP
15. Arbuzova V.S., Maystrenko O.I., Popova O.M. Development of near-isogenic lines of the common wheat cultivar ‘Saratovskaya 29’. Cereal Res.Com. 1998;26(1):39-46. DOI: 10.1007/BF03543466 EDN: LEWSHR
16. Dubcovsky J., Luo M.C., Zhong G.Y., Bransteitter R., Desai A., Kilian A., Kleinhofs A., Dvořák J. Genetic map of diploid wheat, Triticum monococcum L., and its comparison with maps of Hordeum vulgare L. Genetics. 1996;143(2):983-999. DOI: 10.1093/genetics/143.2.983 EDN: YBDOBD
17. Dwivedi S.L., Mattoo A.K., Garg M., Dutt S., Singh B., Ortiz R. Developing germplasm and promoting consumption of anthocyanin-rich grains for health benefits. Front. Sust. Food Syst. 2022;6:867897. DOI: 10.3389/fsufs.2022.867897 EDN: OYQXAZ
18. Garg M., Chawla M., Chunduri V., Kumar R., Sharma S., Sharma N.K., Kaur N., Kumar A., Mundey J.K., Saini M.K., Singh S.P. Transfer of grain colors to elite wheat cultivars and their characterization. J. Cereal Sci. 2016;71:138-144. DOI: 10.1016/j.jcs.2016.08.004 EDN: XUCNUB
19. Gordeeva E., Badaeva E., Yudina R., Shchukina L., Shoeva O., Khlestkina E. Marker-assisted development of a blue-grained substitution line carrying the Thinopyrum ponticum chromosome 4Th(4D) in the spring bread wheat Saratovskaya 29 background. Agronomy. 2019;9(11):723. DOI: 10.3390/agronomy9110723 EDN: XROZCI
20. Gordeeva E., Shamanin V., Shoeva O., Kukoeva T., Morgounov A., Khlestkina E. The strategy for marker-assisted breeding of anthocyanin-rich spring bread wheat (Triticum aestivum L.) cultivars in Western Siberia. Agronomy. 2020;10(10):1603. DOI: 10.3390/agronomy10101603 EDN: YARCJM
21. Gordeeva E., Shoeva O., Mursalimov S., Adonina I., Khlestkina E. Fine points of marker-assisted pyramiding of anthocyanin biosynthesis regulatory genes for the creation of black-grained bread wheat (Triticum aestivum L.) lines. Agronomy. 2022;12(12):2934. DOI: 10.3390/agronomy12122934 EDN: OVAWJG
22. Guan P., Lu L., Jia L., Kabir M.R., Zhang J., Lan T., Zhao Y., Xin M., Hu Z., Yao Y., Ni Z., Sun Q., Peng H. Global QTL analysis identifies genomic regions on chromosomes 4A and 4B harboring stable loci for yieldrelated traits across different environments in wheat (Triticum aestivum L.). Front. Plant Sci. 2018;9:529. DOI: 10.3389/fpls.2018.00529 EDN: YGVRUT
23. Gupta P.K., Mir R.R., Mohan A., Kumar J. Wheat genomics: present status and future prospects.Int. J. Plant Genomics. 2008;2008:896451. DOI: 10.1155/2008/896451 EDN: PKLHCJ
24. Himi E., Taketa S. Isolation of candidate genes for the barley Ant1 and wheat Rc genes controlling anthocyanin pigmentation in different vegetative tissues. Mol. Genet. Genomics. 2015;290(4):1287-1298. DOI: 10.1007/s00438-015-0991-0 EDN: UONVLP
25. Jiang W., Liu T., Nan W., Jeewani D.C., Niu Y., Li C., Wang Y., Shi X., Wang C., Wang J., Li Y., Gao X., Wang Z. Two transcription factors TaPpm1 and TaPpb1 co-regulate anthocyanin biosynthesis in purple pericarps of wheat. J. Exp. Bot. 2018;69(10):2555-2567. DOI: 10.1093/jxb/ery101 EDN: YIGHMD
26. Keppenne V.D., Baenziger S. Inheritance of the blue aleurone trait in diverse wheat crosses. Genome. 1990;33(4):525-529. DOI: 10.1139/g90-078
27. Korzun V., Röder M., Worland A.J., Börner A.Intrachromosomal mapping of genes for dwarfing (Rht12) and vernalization response (Vrn1) in wheat by using RFLP and microsatellite markers. 1997;116(3):227-232. DOI: 10.1111/j.1439-0523.1997.tb00987.x
28. Landi M., Tattini M., Gould K.S. Multiple functional roles of anthocyanins in plant-environment interactions. Env. Exp. Botany. 2015;119:4-17. DOI: 10.1016/j.envexpbot.2015.05.012 EDN: USXNZP
29. Lap B., Rai M., Tyagi W. Playing with colours: genetics and regulatory mechanisms for anthocyanin pathway in cereals. Biotechnol. Genet. Eng. Rev. 2021;37(1):1-29. DOI: 10.1080/02648725.2021.1928991 EDN: BKZPGI
30. Li N., Li S., Zhang K., Chen W., Zhang B., Wang D., Liu D., Liu B., Zhang H. ThMYC4E, candidate Blue aleurone 1 gene controlling the associated trait in Triticum aestivum. PLoS One. 2017;12(7):e0181116. DOI: 10.1371/journal.pone.0181116
31. Li W.L., Faris J.D., Chittoor J.M., Leach J.E., Hulbert S.H., Liu D.J., Chen P.D., Gill B.S. Genomic mapping of defense response genes in wheat. Theor. Appl. Genet. 1999;98:226-233. DOI: 10.1007/s001220051062 EDN: AVWCHH
32. Ludwig S.R., Habera L.F., Dellaporta S.L., Wessler S.R. Lc, a member of the maize R gene family responsible for tissue-specific anthocyanin production, encodes a protein similar to transcription activators and contains the myc-homology region. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989;86(18):7092-7096. DOI: 10.1073/pnas.86.18.7092
33. Plaschke J., Ganal M.W., Roeder M.S. Detection of genetic diversity in closely related bread wheat using microsatellite markers. Theor. Appl. Genet. 1995;91(6-7):1001-1007. DOI: 10.1007/BF00223912 EDN: OODEIJ
34. Röder M.S., Korzun V., Wendehake K., Plaschke J., Tixier M.H., Leroy P., Ganal M.W. A microsatellite map of wheat. Genetics. 1998;149(4):2007-2023. DOI: 10.1093/genetics/149.4.2007
35. Sharma S., Chunduri V., Kumar A., Kumar R., Khare P., Kondepudi K.K., Bishnoi M., Garg M. Anthocyanin bio-fortified colored wheat: Nutritional and functional characterization. PloS One. 2018;13(4):e0194367. DOI: 10.1371/journal.pone.0194367
36. Shen X., Yuan Y., Zhang H., Guo Y., Zhao Y., Li S., Kong F. The hot QTL locations for potassium, calcium, and magnesium nutrition and agronomic traits at seedling and maturity stages of wheat under different potassium treatments. Genes. 2019;10(8):607. DOI: 10.3390/genes10080607
37. Shen Y., Shen J., Dawadondup, Zhuang L., Wang Y., Pu J., Feng Y., Chu C., Wang X., Qi Z. Physical localization of a novel blue-grained gene derived from Thinopyrum bessarabicum. Mol. Breed. 2013;31:195-204. DOI: 10.1007/s11032-012-9783-y EDN: KJMABX
38. Shoeva O.Y., Gordeeva E.I., Khlestkina E.K. The regulation of anthocyanin synthesis in the wheat pericarp. Molecules. 2014;19(12):2026-620279. DOI: 10.3390/molecules191220266 EDN: UFRPCZ
39. Singh K., Ghai M., Garg M., Chhuneja P., Kaur P., Schnurbusch T., Keller B., Dhaliwal H.S. An integrated molecular linkage map of diploid wheat based on a Triticum boeoticum × T. monococcum RIL population. Theor. Appl. Genet. 2007;115(3):301-312. DOI: 10.1007/s00122-007-0543-z EDN: MDXUCJ
40. Syed Jaafar S.N., Baron J., Siebenhandl-Ehn S., Rosenau T., Böhmdorfer S., Grausgruber H. Increased anthocyanin content in purple pericarp × blue aleurone wheat crosses. Plant Breed. 2013;132(6):546-552. DOI: 10.1111/pbr.12090
41. Wang C., Shu Q. Fine mapping and candidate gene analysis of purple pericarp gene Pb in rice (Oryza sativa L.). Chin. Sci. Bull. 2007;52:3097-3104. DOI: 10.1007/s11434-007-0472-x EDN: RUJYOL
42. Wang X., Zhang X., Hou H., Ma X., Sun S., Wang H., Kong L. Metabolomics and gene expression analysis reveal the accumulation patterns of phenylpropanoids and flavonoids in different colored-grain wheats (Triticum aestivum L.). Food Res.Int. 2020;138(Pt. A):109711. DOI: 10.1016/j.foodres.2020.109711
43. Zeven A.C. Wheats with purple and blue grains: a review. Euphytica. 1991;56:243-258. DOI: 10.1007/BF00042371 EDN: SDZBMN
44. Zheng Q., Li B., Mu S., Zhou H., Li Z. Physical mapping of the bluegrained gene(s) from Thinopyrum ponticum by GISH and FISH in a set of translocation lines with different seed colors in wheat. Genome. 2006;49(9):1109-1114. DOI: 10.1139/g06-073
45. Zong Y., Xi X., Li S., Chen W., Zhang B., Liu D., Liu B., Wang D., Zhang H. Allelic variation and transcriptional isoforms of wheat TaMYC1 gene regulating anthocyanin synthesis in pericarp. Front. Plant Sci. 2017;8:1645. DOI: 10.3389/fpls.2017.01645 EDN: YHDJQI
Выпуск
Другие статьи выпуска
В Новосибирской области широко распространено заболевание покрытой головни овса, вызванное возбудителем Ustilago kolleri Wille. C 2013 по 2022 г. проведены исследования по определению расовой дифференциации популяции возбудителя покрытой головни овса. Работа выполнена на искусственном инфекционном фоне фитопатологического участка лаборатории генофонда растений СибНИИРС - филиала ИЦиГ СО РАН с использованием общепринятого российского набора сортов-дифференциаторов. Анализ экспериментальных данных показал, что новосибирская популяция U. kolleri не дифференцируется на расы. Сорта-дифференциаторы проявляют тип реакции, который не соотносится с известным ключом для определения рас. С 2020 г. выявлены изменения в вирулентности популяции U. kolleri. Высокоустойчивые сорта Monarch, Fulghum, Сиг и Орион с 2020 г. стали в значительной степени поражаться патогеном. Стабильную устойчивость к возбудителю покрытой головни за все годы наблюдений проявляли сорта Black Diamond, Black Mesdag и Льговский 1026. Отмечено отличие новосибирской популяции гриба по вирулентности от популяций Омской области и Алтайского края.
В обзорной статье приведены результаты исследований, свидетельствующие об участии внеклеточных нуклеиновых кислот в процессах регенерации поврежденной ткани. Высвобождаемые из поврежденных клеток нуклеиновые кислоты в качестве аларминов, выступая лигандами для эндосомальных толл-подобных рецепторов (TLRs), активируют их и через TLR-зависимый механизм индуцируют стерильное воспаление, которое необходимо для восстановления повреждения. Нарушение регуляции процессов воспаления может привести к развитию различных патологий. Критическим является переход от фазы воспаления к фазе пролиферации. Этот переход сложно и четко регулируется, однако тонкости управления до конца не выяснены.
Факультативные формы тритикале могут давать потомство как после осеннего, так и весеннего сева. Вопрос, при каком типе сева их целесообразней выращивать, решается экспериментально. Цель данной работы заключается в определении способа сева факультативных форм тритикале, при котором они в большей степени реализовывают положительные свойства и потенциал продуктивности в условиях Новосибирской области. В 2020 и 2021 гг. после осеннего и весеннего сева изучены размещенные по черному пару по общепринятой методике полевого опыта факультативные формы тритикале, созданные из двух озимых сортов и четырех яровых коллекционных образцов. Тритикале Цекад 90/5 и Сирс 57/2/4, полученные из озимых сортов, показали длительный вегетационный период и высокую перезимовку (97.5-100 %) в отличие от четырех форм, выделенных из яровых коллекционных образцов - Укро, Квадро, Ульяна, Лотас, у которых этот показатель варьировал от 37.5 (Укро) до 80 (Лотас) %. У всех форм увеличились натура зерна, масса 1000 зерен, длина соломины, число колосков в колосе, а число зерен и длина колоса уменьшились (кроме Укро) при осеннем севе по сравнению с весенним. Число продуктивных стеблей после осеннего сева и перезимовки было существенно выше, чем после весеннего сева, у трех форм: Цекад 90/5, Сирс 57/2/4 и Квадро. У других трех форм, наоборот, растения после весеннего сева были более кустистыми. У тритикале Цекад 90/5 и Сирс 57/2/4 продуктивность зерна была значительно выше при осеннем севе, чем при весеннем. У четырех форм, выделенных из яровых коллекционных образцов, показатель продуктивности зерна оказался выше при весеннем севе. Таким образом, у факультативных форм тритикале, созданных из озимых сортов, лучшие показатели селекционно ценных признаков проявляются после осеннего сева, а у факультативных форм, созданных из яровых коллекционных форм, - после весеннего сева.
Представлен обзор шкал для оценки роста и развития злаков. Выделены классификации, посвященные оценке внешнего развития растений (фенологические шкалы Фикеса, Задокса, Хауна, BBCH) и развития апикальной меристемы. Кроме того, проанализированы двенадцать этапов органогенеза, а также указан их вклад в формирование элементов продуктивности. Приведено сравнение шкал роста и развития пшеницы, показано, как они соотносятся между собой.
Внесение аллелей улучшенного качества волокна от Gossypium barbadense L. в сорта широко культивируемого хлопчатника Gossypium hirsutum L. требует межвидовой интрогрессии, что предполагает использование линий с замещением отдельных хромосом. В данной работе при создании таких линий обнаружена тенденция снижения скрещиваемости, а также завязываемости и всхожести гибридных семян с увеличением числа беккроссов, выяснение причин которой представляет значительный интерес. При изучении скрещиваемости 12 моносомных и одной монотелосомной линий хлопчатника G. hirsutum с анеуплоидными гибридами BC 1 F 1 выявлены различия в скрещиваемости (от 7.14 до 100 %), причем в восьми вариантах наблюдалось увеличение в BC 2 F 1 по сравнению с гибридами BC 1 F 1, тогда как в пяти вариантах - уменьшение (до 7.14 %). У гибридов BC 3 F 1 определено значительное снижение скрещиваемости во всех вариантах (от 3.85 до 33.33 %), за исключением одной линии. В целом на протяжении четырех поколений зарегистрировано линейное снижение скрещиваемости в двух беккроссных вариантах (с линиями Мо17 и Тело21). Завязываемость гибридных семян также существенно различалась в BC 2 F 1, где в девяти вариантах наблюдалось снижение числа семян (от 8.43 ± 2.16 до 64.35 ± 4.47 %), а в четырех - увеличение по сравнению с гибридами BC 1 F 1. Для гибридов BC 3 F 1, наоборот, было характерно увеличение завязываемости семян в восьми вариантах, тогда как в трех - значительное снижение (от 7.14 ± 3.97 до 41.46 ± 7.69 %). Чередование высоких и низких показателей скрещиваемости и завязываемости семян объяснялось межвидовыми особенностями, специфичностью нехваток и генетической обусловленностью такого снижения у исходных моносомиков. Выявлено снижение всхожести беккроссных семян BC 2 F 1 в шести вариантах скрещиваний (от 30.00 до 87.71 %), тогда как в семи других вариантах - увеличение по сравнению с гибридами BC 1 F 1. Гибриды BC 3 F 1 характеризовались снижением всхожести семян в пяти вариантах (от 44.00 до 82.35 %) и увеличением - в шести. Снижение всхожести происходило из-за низкого прорастания семян с нуллисомией по сравнению с дисомными сибсами, что приводило к задержке общих темпов всхожести. Показана перспективность изучения беккроссных семей с достаточным числом гибридов и высокой всхожестью семян для выявления моносомных генотипов с чужеродным замещением хромосом вида G. barbadense в процессе дальнейшего беккроссирования
Издательство
- Издательство
- НИИТПМ
- Регион
- Россия, Новосибирск
- Почтовый адрес
- 630089, г. Новосибирск, ул. Б. Богаткова, 175/1, Метро "Золотая нива", Автобус "Молодежная, Кошурникова"
- Юр. адрес
- 630090, г. Новосибирск, пр-т Академика Лаврентьева, 10
- ФИО
- Рагино Юлия Игоревна (Руководитель)
- Контактный телефон
- +7 (383) 3730981
- Сайт
- https://iimed.ru/