Введение. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота широко распространена во всех странах мира, в том числе и в Российской Федерации. Этиологический агент – Orthopneumovirus bovis, относящийся к семейству Pneumoviridae, роду Orthopneumovirus. Крупный рогатый скот – основной резервуар вируса. Цель исследования. Целью данного обзора литературы являлось обобщение и анализ опубликованных данных об особенностях клинического проявления, патогенеза и молекулярной эпизоотологии возбудителя респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.
Материалы и методы. Информационной базой для проведения исследования служили публикации из наиболее авторитетных отечественных (eLIBRARY. RU) и иностранных (Web of Science, Scopus, PubMed) источников, а также результаты собственных исследований, опубликованных в литературе.
Результаты. Заболеванию подвержены животные всех возрастов, наиболее тяжело протекает инфекция у телят в возрасте до 6 месяцев. Заболеваемость поголовья составляет в среднем 60–80%. Характер течения инфекции варьирует от бессимптомного и легкого до тяжелого заболевания нижних дыхательных путей, включая эмфизему, отек легкого, интерстициальную пневмонию и бронхопневмонию, при этом уровень смертности среди телят может достигать 20%, а у взрослых животных чаще регистрируют субклиническую форму. Вирус оказывает мощное иммуномодулирующее действие. Тяжелые повреждения дыхательных путей опосредованы в основном гиперактивностью иммунного ответа, а не самой репликацией вируса. Вирус повышает восприимчивость телят к вторичным инфекциям и способствует колонизации нижних дыхательных путей бактериями. В настоящее время с помощью филогенетического анализа нуклеотидных последовательностей генов G и N выявлено десять генетических подгрупп вируса (I–X), между которыми существует географическая корреляция. В таких регионах, как Урал, Сибирь, а также в Республике Казахстан среди крупного рогатого скота циркулируют изоляты вируса генетических подгрупп II и III.
Заключение. В обзоре представлены актуальные данные об этиологии, особенностях патогенеза и клинического проявления респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, а также генетическом разнообразии возбудителя в мире, Российской Федерации и Республике Казахстан.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота (РСИ КРС) – контагиозная, остро протекающая вирусная болезнь, характеризующаяся поражением органов дыхания, преимущественно нижних отделов, у крупного рогатого скота. В структуре инфекционной патологии респираторного тракта РСИ КРС занимает одно из ведущих мест [1, 2, 3, 4].
Список литературы
1. Sarmiento-Silva R. E., Nakamura-Lopez Y., Vaughan G. Epidemiology, molecular epidemiology and evolution of bovine respiratory syncytial virus. Viruses. 2012; 4 (12): 3452-3467. DOI: 10.3390/v4123452
2. Klem T. B., Gulliksen S. M., Lie K.-I., Loken T., 0sterâs O., Stokstad M. Bovine respiratory syncytial virus: infection dynamics within and between herds. Veterinary Record. 2013; 173 (19):476. DOI: 10.1136/vr.101936
3. Gaudino M., Nagamine B., Ducatez M. F., Meyer G. Understanding the mechanisms of viral and bacterial coinfections in bovine respiratory disease: a comprehensive literature review of experimental evidence. Veterinary Research. 2022; 53 (1):70. DOI: 10.1186/s13567-022-01086-1
4. Актуальные инфекционные болезни крупного рогатого скота: руководство. Под ред. проф. Т. И. Алипера. М.: Сельскохозяйственные технологии; 2021. 832 с.
5. Walker P. J., Siddell S. G., Lefkowitz E. J., Mushegian A. R., Adriaenssens E. M., Alfenas-Zerbini P., et al. Recent changes to virus taxonomy ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses (2022). Archives of Virology. 2022; 167 (11): 2429-2440. DOI: 10.1007/s00705-022-05516-5
6. Larsen L. E. Bovine respiratory syncytial virus (BRSV): a review. Acta Veterinaria Scandinavica. 2000; 41 (1): 1-24. DOI: 10.1186/BF03549652
7. Valarcher J. F., Schelcher F., Bourhy H. Evolution of bovine respiratory syncytial virus. Journal of Virology. 2000; 74 (22): 10714-10728. DOI: 10.1128/jvi.74.22.10714-10728.2000
8. Nisavic J., Milic N., Radalj A., Stanojkovic A., Veljovic L. Laboratory diagnostics of bovine parainfluenza-3 virus, bovine herpesvirus 1, and bovine respiratory syncytial virus associated with bovine respiratory disease. Biotechnology in Animal Husbandry. 2021; 37 (1): 1-15. DOI: 10.2298/BAH2101001N
9. Citterio C. V., Luzzago C., Sala M., Sironi G., Gatti P., Gaffuri A., Lanfranchi P. Serological study of a population of alpine chamois (Rupicapra rupicapra) affected by an outbreak of respiratory disease. Veterinary Record. 2003; 153 (19): 592-596. DOI: 10.1136/vr.153.19.592
10. Мищенко В. А., Думова В. В., Киселев М. Ю., Мищенко А. В. Изучение распространения вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота у жвачных животных. Ветеринарна медицина. 2011; 95: 169-170.
11. Urban-Chmiel R., Wernicki A., Stçgierska D., Marczuk J., Rola J., Socha W., Valverde Piedra J. L. Detection of BHV-1 and BRSV viruses in European bison in the Bialowieza forest: a preliminary study. Journal of Applied Animal Research. 2017; 45 (1): 170-172. DOI: 10.1080/09712119.2015.1124335
12. Chang Y., Yue H., Tang C. Prevalence and molecular characteristics of bovine respiratory syncytial virus in beef cattle in China. Animals. 2022; 12 (24):3511. DOI: 10.3390/ani12243511
13. Brito B. P., Frost M. J., Anantanawat K., Jaya F., Batterham T., Djordjevic S. P., et al. Expanding the range of the respiratory infectome in Australian feedlot cattle with and without respiratory disease using metatranscrip-tomics. Microbiome. 2023; 11 (1):158. DOI: 10.1186/s40168-023-01591-1
14. Aydin O., Yilmaz A., Turan N., Richt J. A., Yilmaz H. Molecular characterisation and antibody response to bovine respiratory syncytial virus in vaccinated and infected cattle in Turkey. Pathogens. 2024; 13 (4):304. DOI: 10.3390/pathogens13040304
15. Ohlson A., Heuer C., Lockhart C., Trâvén M., Emanuelson U., Alenius S. Risk factors for seropositivity to bovine coronavirus and bovine respiratory syncytial virus in dairy herds. Veterinary Record. 2010; 167 (6): 201-207. DOI: 10.1136/vr.c4119
16. Гуненков В. В., Халенев Г. А., Сюрин В. Н. Респираторно-синцитиальная вирусная инфекция. Животноводство и ветеринария. 1975; (8): 70-76.
17. Строганова И. Я. Респираторно-синцитиальная инфекция у крупного рогатого скота. БИО. 2019; (7): 14-15.
18. Глотов А. Г., Глотова Т. И., Котенева С. В., Нефедченко А. В., Войтова К. В. Эпизоотическая ситуация по респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в хозяйствах по производству молока. Ветеринария. 2010; (7): 21-25.
19. Глотов А. Г., Южаков А. Г., Глотова Т. И., Нефедченко А. В., Котенева С. В., Комина А. К., Жукова Е. В. Частота выявления от больных животных и генетический полиморфизм сибирских изолятов респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота (Pneumoviridae: Orthopneumovirus; BRSV), выявленных на территориях Уральского и Сибирского федеральных округов РФ и Республики Казахстан. Вопросы вирусологии. 2024; 69 (1): 76-87. DOI: 10.36233/0507-4088-216
20. Valarcher J.-F., Taylor G. Bovine respiratory syncytial virus infection. Veterinary Research. 2007; 38 (2): 153-180. :2006053. DOI: 10.1051/vetres
21. Valentova V. The antigenic and genetic variability of bovine respiratory syncytial virus with emphasis on the G protein. Veterinàrnt Medicma. 2003; 48 (9): 254-266. DOI: 10.17221/5778-
22. Van der Poel W. H. M., Brand A., Kramps J. A., Van Oirschot J. T. Respiratory syncytial virus infections in human beings and in cattle. Journal of Infectious. 1994; 29 (2): 215-228. DOI: 10.1016/s0163-4453(94)90866-4
23. Werid G. M., Wubshet A. K., Araya T. T., Miller D., Hemmatzadeh F., Reichel M. P., Petrovski K. Detection of bovine respiratory syncytial virus in cattle: a systematic review and meta-analysis.Ruminants. 2024; 4 (4): 491-514. DOI: 10.3390/ruminants4040035
24. Baker J. C., Ames T. R., Werdin R. E. Seroepizootiologic study of bovine respiratory syncytial virus in a beef herd. American Journal of Veterinary Research. 1986; 47 (2): 246-253. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/3954199.
25. Da Silva Barcelos L., Ford A. K., Frühauf M. I., Botton N. Y., Fischer G., Maggioli M. F.Interactions between bovine respiratory syncytial virus and cattle: aspects of pathogenesis and immunity. Viruses. 2024; 16 (11):1753. DOI: 10.3390/v16111753
26. Kumagai A., Kawauchi K., Andoh K., Hatama S. Sequence and unique phylogeny of G genes of bovine respiratory syncytial viruses circulating in Japan. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2021; 33 (1): 162-166. DOI: 10.1177/1040638720975364
27. Fuentes S., Tran K. C., Luthra P., Teng M. N., He B. Function of the respiratory syncytial virus small hydrophobic protein. Journal of Virology. 2007; 81 (15): 8361-8366. DOI: 10.1128/JVI.02717-06
28. Espinoza J. A., Bohmwald K., Céspedes P. F., Riedel C. A., Bueno S. M., Kalergis A. M. Modulation of host adaptive immunity by hRSV proteins. Virulence. 2014; 5 (7): 740-751. DOI: 10.4161/viru.32225
29. Kresic N., Bedekovic T., Brnic D., Simic I., Lojkic I., Turk N. Genetic analysis of bovine respiratory syncytial virus in Croatia.Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. 2018; 58: 52-57. DOI: 10.1016/j.cimid.2018.09.004
30. Piedimonte G., Perez М. К. Respiratory syncytial virus infection and bronchiolitis. Pediatrics in Review. 2014; 35 (12): 519-530. DOI: 10.1542/pir.35-12-519
31. Piedimonte G. RSV infections: State of the art. Cleveland Clinic Journal of Medicine. 2015; 82 (11, Suppl. 1): S13-S18. DOI: 10.3949/ccjm.82.s1.03
32. Persson B. D., Jaffe A. B., Fearns R., Danahay H. Respiratory syncytial virus can infect basal cells and alter human airway epithelial differentiation. PLoS ONE. 2014; 9 (7):e102368. DOI: 10.1371/journal.pone.0102368
33. Shang Z., Tan S., Ma D. Respiratory syncytial virus: from pathogenesis to potential therapeutic strategies.International Journal of Biological Sciences. 2021; 17 (14): 4073-4091. DOI: 10.7150/ijbs.64762
34. Gershwin L. J. Immunology of bovine respiratory syncytial virus infection of cattle.Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. 2012; 35 (3): 253-257. DOI: 10.1016/j.cimid.2012.01.005
35. Ozkanlar Y., Akta§ M. S., Kaynar O., Ozkanlar S., Kirecci E., Yildiz L. Bovine respiratory disease in naturally infected calves: clinical signs, blood gases and cytokine response. Revue de Medecine Veterinaire. 2012; 163 (3): 123-130. http://www.revmedvet.com/2012/RMV163_123_130.pdf.
36. McGill J. L., Rusk R. A., Guerra-Maupome M., Briggs R. E., Sacco R. E. Bovine gamma delta T cells contribute to exacerbated IL-17 production in response to co-infection with bovine RSV and Mannheimia haemo-lytica. PLoS ONE. 2016; 11 (3):e0151083. DOI: 10.1371/journal.pone.0151083
37. Brodersen B. W. Bovine respiratory syncytial virus. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2010; 26 (2): 323-333. DOI: 10.1016/j.cvfa.2010.04.010
38. Agnes J. T., Zekarias B., Shao M., Anderson M. L., Gershwin L. J., Corbeil L. B. Bovine respiratory syncytial virus and Histophilus somni interaction at the alveolar barrier. Infection and Immunity. 2013; 81 (7): 2592-2597. DOI: 10.1128/IAI.00108-13
39. Hendaus M. A., Jomha F. A., Alhammadi A. H. Virus-induced secondary bacterial infection: a concise review. Therapeutics and Clinical Risk Management. 2015; 11: 1265-1271. DOI: 10.2147/TCRM.S87789
40. Headley S. A., Balbo L. C., Alfieri A. F., Saut J. P. E., Baptista A. L., Alfieri A. A. Bovine respiratory disease associated with Histophilus somni and bovine respiratory syncytial virus in a beef cattle feedlot from Southeastern Brazil. Semina: Ciências Agrârias, Londrina. 2017; 38 (1): 283-294. DOI: 10.5433/1679-0359.2017v38n1p283
41. Sudaryatma P. E., Mekata H., Kubo M., Subangkit M., Goto Y., Okabayashi T. Co-infection of epithelial cells established from the upper and lower bovine respiratory tract with bovine respiratory syncytial virus and bacteria. Veterinary Microbiology. 2019; 235: 80-85. DOI: 10.1016/j.vetmic.2019.06.010
42. Sudaryatma P. E., Saito A., Mekata H., Kubo M., Fahkrajang W., Mazimpaka E., Okabayashi T. Bovine respiratory syncytial virus enhances the adherence of Pasteurella multocida to bovine lower respiratory tract epithelial cells by upregulating the platelet-activating factor receptor. Frontiers in Microbiology. 2020; 11:1676. DOI: 10.3389/fmicb.2020.01676
43. Yamamoto S., Okumura S., Kübayashi R., Maeda Y., Takahashi F., Tanabe T. Bovine respiratory syncytial virus enhances the attachment of Trueperella pyogenes to cells. Journal of Veterinary Medical Science. 2024; 86 (10): 1068-1075. DOI: 10.1292/jvms.24-0068
44. Belknap E. B., Ciszewski D. K., Baker J. C. Experimental respiratory syncytial virus infection in calves and lambs. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 1995; 7 (2): 285-298. DOI: 10.1177/104063879500700226
45. Sacco R. E., McGill J. L., Pillatzki A. E., Palmer M. V., Ackermann M. R. Respiratory syncytial virus infection in cattle. Veterinary Pathology. 2014; 51 (2): 427-436. DOI: 10.1177/0300985813501341
46. Bertolotti L., Giammarioli M., Rosati S. Genetic characterization of bovine respiratory syncytial virus strains isolated in Italy: evidence for the circulation of new divergent clades. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2018; 30 (2): 300-304. DOI: 10.1177/1040638717746202
47. Larsen L. E., Tjornehoj K., Viuff B. Extensive sequence divergence among bovine respiratory syncytial viruses isolated during recurrent outbreaks in closed herds. Journal of Clinical Microbiology. 2000; 38 (11): 4222-4227. DOI: 10.1128/jcm.38.11.4222-4227.2000
48. Stott E. J., Taylor G. Respiratory syncytial virus: brief review. Archives of Virology. 1985; 84: 1-52. DOI: 10.1007/BF01310552
49. Valentova V., Antonis A., Kovarcik K. Restriction enzyme analysis of RT-PCR amplicons as a rapid method for detection of genetic diversity among bovine respiratory syncytial virus isolates. Veterinary Microbiology. 2005; 108 (1-2): 1-12. DOI: 10.1016/j.vetmic.2005.02.008
50. Ince Ö. B., §evik M., Özgür E. G., Sait A. Risk factors and genetic characterization of bovine respiratory syncytial virus in the inner Aegean Region, Turkey. Tropical Animal Health and Production. 2022; 54 (1):4. DOI: 10.1007/s11250-021-03022-5
51. Leme R. A., Dall Agnol A. M., Balbo L. C., Pereira F. L., Possatti F., Alfieri A. F., Alfieri A. A. Molecular characterization of Brazilian wild-type strains of bovine respiratory syncytial virus reveals genetic diversity and a putative new subgroup of the virus. Veterinary Quarterly. 2020; 40 (1): 83-96.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Введение. Микотоксины – вторичные метаболиты плесневых грибов, являются контаминантами, подлежат контролю. Согласно принятой классификации, по требованиям Директивы Совета Европейского союза 96/23ЕС, относятся к группе В3: «Прочие вещества и загрязнители окружающей среды». Информация о выявлении превышения предельно допустимых концентраций в кормах и пищевых продуктах вносится в информационную систему RASFF и ACN, функционирующую на территории стран Европейского союза.
Цель исследования. Анализ сведений о контаминации микотоксинами пищевой продукции и кормов за период с 2020 по 2022 г., зарегистрированных в информационной системе RASFF и ACN.
Материалы и методы. Объектом анализа были 1335 сообщений о превышении предельно допустимых концентраций микотоксинов (афлатоксинов, охратоксина А, дезоксиниваленола, зеараленона и патулина) в пищевых продуктах и кормах.
Результаты. Распределение случаев выявления микотоксинов в анализируемый период: афлатоксины – 87,1%, охратоксин А – 11,6%, патулин – 0,6%, дезоксиниваленол – 0,5%, зеараленон – 0,2%. Превышение предельно допустимой концентрации афлатоксинов чаще всего обнаруживали в арахисе (764 сообщения), охратоксина А – в сушеном инжире (43 сообщения), патулина – в яблочном соке (6 сообщений), зеараленона и дезоксиниваленола – в продукции из категории «крупы и хлебобулочные изделия». В кормах и кормовом сырье были выявлены несоответствия по содержанию исключительно афлатоксинов (33 сообщения), которые в 66,7% случаев обнаруживали в арахисе, предназначенном для кормовых целей. Анализ динамики контаминации продукции микотоксинами показал, что в 2021 и 2022 гг. наблюдали рост количества регистрируемых сообщений об их детекции.
Заключение. Согласно отчетам RASFF и ACN за 2020–2022 гг., микотоксины представляли третью по распространенности категорию опасности. Нарушение законодательства в части превышения предельно допустимых концентраций микотоксинов выявлено исключительно в продукции растительного происхождения.
Введение. Клостридиозы, несмотря на относительно спорадические случаи их возникновения, имеют повсеместное распространение и характеризуются высокой летальностью, что наносит экономический ущерб сельскому хозяйству. У крупного рогатого скота патогенные клостридии вызывают такие заболевания, как энтеротоксемия, злокачественный отек, столбняк, ботулизм. Этиологически значимыми видами клостридий являются Clostridium septicum, Clostridium perfringens, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii.
Цель работы. Изучение видового разнообразия клостридий на основании исследований патолого-анатомического и секционного материала крупного рогатого скота из различных регионов России, определение мест их локализации в организме животных, а также антибактериальной устойчивости Clostridium perfringens к наиболее распространенным группам антибиотиков.
Материалы и методы. В период проведения исследования руководствовались общепринятыми нормативно-правовыми документами, методическими указаниями, рекомендациями, инструкциями; применяли микробиологические, масс-спектрометрические методы. Для определения антибактериальной устойчивости использовались различные группы препаратов: макролиды, монобактамы, пенициллины, полипептиды, гликопептиды, аминогликозиды, карбапенемы, линкозамиды, тетрациклины, ансамицины, диаминопиримидины, фузидины и др. Изоляты клостридий выделяли, используя рутинные бактериологические методы, видовую идентификацию выполняли с помощью времяпролетной масс-спектрометрии MALDI-ToF.
Результаты. При исследовании 359 образцов биоматериала было выделено и идентифицировано 137 изолятов клостридий (Paraclostridium bifermentans, Clostridium perfringens, Clostridium tertium, Clostridium butyricum, Clostridium septicum, Clostridium sporogenes, Clostridium cadaveris, Clostridium sphenoides, Clostridium cochlearium, Clostridium sartagoforme, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii, Clostridium paraputrificum, Clostridium spp.), из которых 25 обладали патогенными и 17 – токсигенными свойствами. Чаще всего клостридии обнаруживали в печени, тонком и толстом отделах кишечника, мышцах. При этом выявлено превалирование Clostridium perfringens (17,5%). Установлена полирезистентность изолятов данного вида бактерии к цефиксиму, фузидиевой кислоте, цефотаксиму, цефаклору, спектиномицину, пиперациллину, кларитромицину, дорипенему, доксициклину.
Заключение. Полученные результаты могут быть использованы для модификации существующих протоколов лечения клостридиозов, корректировки состава иммунобиологических препаратов, разработки рекомендаций по использованию антибиотиков в животноводстве для снижения рисков развития антимикробной резистентности.
Введение. При снижении компенсаторных механизмов резистентности организма, изменении состава эволюционно сложившихся микробиоценозов избыточному росту патогенных микроорганизмов способствует репрезентация сигнальных молекул quorum sensing. Антибактериальный потенциал ингибиторов синтеза молекул межклеточных коммуникаций достигается за счет снижения адгезии микроорганизмов, а соответственно, и степени контаминации in vivo и in vitro.
Цель исследования. Изучение динамики изменений морфометрических и денситометрических показателей биопленок изолятов Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris, идентифицированных при болезнях органов дыхания и пищеварения птиц.
Материалы и методы. Исследовали динамику развития биопленок референтных штаммов и изолятов, выделенных из патматериала птицы: куры кросса ROSS-308 40–42-недельного возраста (n = 20). Оптическую плотность исследуемых образцов определяли с применением фотометрического анализатора Immunochem-2100 (HTI, США), длина волны 580 нм (OD580). Морфометрические показатели учитывали при достоверной частоте встречаемости ≥ 90,0% поля зрения оптического микроскопа H604 Trinocular Unico (United Рroducts & Instruments Inc., США) и сканирующего электронного микроскопа Hitachi TM3030 Plus (Hitachi, Япония).
Результаты. Из патматериала птиц с признаками катарально-геморрагического аэросаккулита, геморрагического энтерита, фибринозного полисерозита и спленомегалии были выделены и идентифицированы Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris. В зависимости от времени культивирования установлены прямые коррелятивные зависимости (r = 0,91) между морфометрическими и денситометрическими показателями. При дисперсии гетерогенной популяции доминируют клетки с дефектной клеточной стенкой, сферопласты, игольчатые и гигантские структуры, а также клетки-ревертанты.
Заключение. Общие закономерности динамики развития гетерогенной популяции микроорганизмов опосредованы адгезией, синтезом экзоцеллюлярных молекул, интенсивной пролиферацией и дифференциацией клеток в зависимости от стадии клеточного цикла.
Введение. В настоящий момент на базе подведомственного Россельхознадзору Федерального центра охраны здоровья животных (ФГБУ «ВНИИЗЖ», г. Владимир) разработана в соответствии с требованиями законодательства Российской Федерации вакцина против чумы плотоядных, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, аденовирусной инфекции и бешенства собак «Карникан-5R». Для ее создания были использованы штаммы вирусов, циркулирующие на территории страны и актуальные в настоящее время.
Цель исследования. Изучение антигенных свойств вакцины «Карникан-5R» на целевых животных: определение срока формирования гуморального иммунитета и продолжительности иммунитета на протяжении периода наблюдения.
Материалы и методы. В исследовании использовали ассоциированную вакцину «Карникан-5R», состоящую из двух компонентов: лиофилизированного и жидкого. В качестве животных моделей для изучения антигенных свойств препарата служили собаки 10–12-недельного возраста. Уровень антител оценивали в реакции нейтрализации, реакции торможения гемагглютинации и реакции нейтрализации методом FAVN (Fluorescent Antibody Virus Neutralization).
Результаты. Установлено, что вакцинация собак индуцировала выработку антител к возбудителям указанных инфекций. Двукратное введение вакцины «Карникан-5R» с интервалом 21 сут стимулировало формирование напряженного гуморального ответа к 35-м сут после первого введения и прирост титра антител к вирусу чумы плотоядных в 8,6 раза, к парвовирусу собак типа 2 – в 2,1 раза, к коронавирусу собак – в 5,0 раза, к аденовирусу собак серотипа 2 – в 5,36 раза, к вирусу бешенства – в 5,72 раза. Продолжительность специфического иммунитета составила не менее 12 мес. с сохранением протективного уровня титра вирусспецифических антител к указанным возбудителям.
Заключение. Вакцина «Карникан-5R» безвредна и ареактогенна для целевых животных, способствует формированию у собак напряженного иммунитета продолжительностью не менее 12 мес. с момента бустерной вакцинации.
Введение. Мастит крупного рогатого скота является одним из наиболее распространенных и экономически значимых заболеваний в молочном животноводстве. Для его диагностики предложены три хромогенные среды, каждая из которых предназначена для выделения и дифференциации определенных групп возбудителей мастита: среда I – для бактерий семейства Enterobacteriaceae, среда II – для микроорганизмов рода Staphylococcus, среда III – для бактерий рода Streptococcus. Цель исследования. Оценка чувствительности, специфичности, дифференцирующих и ингибирующих свойств хромогенных сред, а также их апробация на образцах молока от коров с маститом.
Материалы и методы. Для оценки чувствительности использовали контрольные штаммы Streptococcus agalactiae, Staphylococcus aureus и Escherichia coli в различных концентрациях (1 × 100, 1 × 101, 1 × 102 КОЕ/мл). Рост микроорганизмов оценивали через 24 ч инкубации при 37 °C. Специфичность и дифференцирующие свойства изучали на 22 штаммах микроорганизмов, сравнивая их рост и цвет колоний на хромогенных и контрольной средах. Ингибирующие свойства оценивали по наличию или отсутствию роста культур. Апробацию сред проводили с использованием образцов молока от коров с маститом, используя стандартизированные методы посева и культивирования.
Результаты. Хромогенные среды показали сопоставимую с контрольной средой (колумбийский агар с добавлением 5% дефибринированной крови барана) чувствительность (p > 0,05). Среда I обеспечила дифференциацию микроорганизмов по цвету колоний, но имела низкие ингибирующие свойства. Среда II избирательно выделяла стафилококки, подавляя рост других бактерий. Среда III поддерживала рост энтерококков и стрептококков, в том числе Streptococcus agalactiae. Апробация на образцах молока подтвердила возможность дифференциации культур до вида.
Заключение. Разработанные хромогенные среды обеспечивают высокую точность диагностики мастита, сочетая чувствительность, специфичность и дифференцирующие свойства. Их комплексное использование позволяет охватить широкий спектр микроорганизмов и избирательно выделить целевые группы бактерий. Дальнейшая работа будет направлена на улучшение сред для подавления роста грибов и повышения точности диагностики.
Введение. При диагностике туберкулеза неспецифические реакции на туберкулин являются одной из наиболее важных проблем, увеличивающихся с каждым годом. Учитывая сложную ситуацию, в том числе и эпидемиологическую, совершенствование методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является весьма актуальным.
Цель исследования. Разработка эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота и внедрение усовершенствованной схемы выявления инфекции в хозяйствах с различным эпизоотическим состоянием в условиях Республики Дагестан.
Материалы и методы. Аллергическим исследованиям подвергли 1670 гол. крупного рогатого скота, серологическим – 3502 образца сывороток крови, иммунологическим – 112 проб, бактериологическим – 57 проб патматериала, отобранного от животных, и 76 проб – из объектов внешней среды. В исследовании использовали штаммы культур Mycobacterium bovis, Mycobacterium bovis БЦЖ, Mycobacterium avium, Mycobacterium scrofulaceum.
Результаты. Установлено широкое распространение неспецифических реакций во всех категориях хозяйств республики. Определена диагностическая ценность внутрикожной и внутривенной проб в неблагополучных по туберкулезу стадах, где число дополнительно выявляемых больных составило 9,4%. Реакция связывания комплемента имеет низкую чувствительность и высокую специфичность. Результаты реакции непрямой гемагглютинации в большинстве случаев не подтверждаются классическими методами, что определяет ее низкую специфичность. Из 57 проб биоматериала было изолировано и идентифицировано 39 культур микобактерий: 8 (20,5%) – M. bovis; 31 (79,5%) – нетуберкулезные кислотоустойчивые виды, из которых 29 (93,5%) относятся к II группе по классификации Раньона, 2 (6,5%) – к III группе. Из 76 проб объектов внешней среды изолированы 43 культуры, из которых 2 (4,6%) отнесены к Mycobacterium bovis, 23 (53,5%) – ко II группе и 18 (41,9%) – к III группе по классификации Раньона. Наилучшими ростовыми и ингибирующими постороннюю микрофлору свойствами обладает яичная среда Левенштейна – Йенсена.
Заключение. Полученные данные являются базисной основой для разработки эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота.
Введение. Наиболее эффективной стратегией борьбы с африканской чумой свиней остается проведение комплекса противоэпизоотических мероприятий, направленных на предотвращение заноса и распространение возбудителя данной болезни. В настоящее время существует широкий спектр коммерческих дезинфицирующих средств, применяемых на объектах ветеринарного надзора, эффективность которых в отношении вируса африканской чумы свиней неизвестна и подтверждается только заверениями производителей, которые не всегда предоставляют обоснованные доказательства.
Цель исследования. Лабораторные испытания вирулицидной активности различных дезинфицирующих препаратов в отношении возбудителя африканской чумы свиней.
Материалы и методы. Исследовано 12 образцов дезинфицирующих средств с различным химическим составом. Первый этап по оценке свойств in vitro проводили суспензионным методом путем добавления к жидкофазному вируссодержащему материалу рабочих растворов испытуемых препаратов в экспериментальных концентрациях и при различном времени экспозиции. Второй этап осуществлялся посредством тестирования смывов с контаминированных вирусом африканской чумы свиней тест-пластин из бетона после их обработки рабочими растворами дезсредств. Каждый этап проводили в двух вариантах: без органического загрязнения и с его имитацией (экспозиция инактивированной сыворотки крови крупного рогатого скота на тест-поверхности). Образцы исследовали методом вирусовыделения в чувствительной культуре клеток селезенки свиньи. Учет и интерпретацию результатов проводили в реакции гемадсорбции. Считали, что образец препарата обладал вирулицидной активностью при отсутствии репродукции вируса африканской чумы свиней.
Результаты. Вирулицидным эффектом в отношении референтного штамма Arm 07 вируса африканской чумы свиней (II генотип) при испытаниях на тест-поверхностях обладали 9 из 12 испытуемых препаратов, что свидетельствует о необходимости проведения дальнейших исследований по оценке действенности различных дезинфицирующих средств в отношении данного возбудителя.
Заключение. Возможность присутствия в коммерческом обороте дезсредств, неспособных при заявленных в инструкции условиях инактивировать вирус африканской чумы свиней, подчеркивает необходимость совершенствования нормативно-правовых актов в целях обеспечения эффективности мер общей профилактики и борьбы с болезнью.
Введение. В Бурунди, где 80% жителей занимается животноводством, преобладают отрасли с коротким циклом воспроизводства (свиноводство, птицеводство). Несмотря на государственные меры поддержки и ежегодный прирост численности поголовья свиней, в стране не удается обеспечить население животноводческой продукцией в полной мере. Это связано с тем, что в отрасли существует немало проблем, среди которых первое место занимают заразные болезни животных. Вспышки инфекционных заболеваний могут иметь катастрофические последствия для населения страны, связанные с подрывом продовольственной безопасности, потерей доступа к животному белку, повышением себестоимости животноводческого производства из-за необходимости применения дорогостоящих мер по борьбе с заболеваниями, последствиями для здоровья человека в случае возникновения зоонозов.
Цель исследования. Изучение нозологического профиля заразной патологии свиней, выявление причин, способствующих инфицированию животных, и оценка эпизоотической ситуации по роже свиней в Республике Бурунди за период с 2018 по 2023 г.
Материалы и методы. Для анализа эпизоотической обстановки по заразным болезням свиней использовали данные ежегодных отчетов Генерального управления животноводства, а также результаты исследований Национальной ветеринарной лаборатории Республики Бурунди за 2018–2023 гг. В процессе работы выполняли ретроспективный и эпизоотологический анализ, применяли методы вариационной статистики.
Результаты. Проведенный анализ показал широкое распространение паразитарных болезней свиней, что связано с особенностями экваториального климата. В общей структуре заразных болезней инвазии занимают лидирующее место с ростом от 81,2% в 2018 г. до 92,8% в 2023 г. На втором месте по распространению находятся инфекционные болезни бактериальной этиологии – от 3,6% в 2018 г. до 6,3% в 2023 г. Выявлено стабильно растущее число случаев рожи свиней: в 2023 г. зарегистрировано в 1,7 раза больше случаев по сравнению с 2022 г. и в 7 раз больше по сравнению с 2020 г. При этом с каждым годом возрастает количество провинций, где выявляют данное заболевание. В настоящее время в 12 из 18 провинций Бурунди регистрируется рожа свиней.
Заключение. Республика Бурунди ежегодно несет большие убытки от гибели животных в результате вспышек заболеваний инфекционной природы. При отсутствии в стране специфической профилактики заразных болезней, в частности рожи, слабом контроле со стороны ветеринарной службы за перемещениями животных между домовладениями инфекции быстро распространяются. Поэтому изучение эпизоотической ситуации и разработка мер для ее стабилизации в конкретных условиях является важной научной и практической задачей для обеспечения биологической и продовольственной безопасности.
Введение. При сокращении промышленных уловов лососевых огромное значение принадлежит рыбоводным заводам по воспроизводству запасов этих видов промысловых рыб. В условиях искусственного выращивания лососевых часто отмечают поражения глаз, которые приводят к снижению уровня адаптации рыб в естественных условиях. Диагностика патологий позволяет классифицировать их по воздействующему фактору и разработать лечебные и профилактические мероприятия.
Цель исследования. Поиск и обобщение научных публикаций по проблеме патологии глаз у лососевых на предприятиях, занимающихся промышленным разведением и их товарным выращиванием или воспроизводством, в странах Азии, Америки, Европы и в Российской Федерации.
Материалы и методы. Проведен поиск русско- и англоязычных статей в наукометрических базах данных PubMed, Scopus, Web of Science, eLIBRARY. RU. Для подготовки обзора была использована информация из 44 научно-исследовательских работ, опубликованных в период с 1975 по 2024 г.
Результаты. Показано, что поражение глаз у атлантического лосося, кумжи, радужной форели в виде непаразитарной катаракты (помутнение хрусталика), кератопатии (помутнение роговицы), одно- или двухстороннего выпадения глазного яблока регистрируется на заводах по воспроизводству водных биологических ресурсов и на объектах аквакультуры в Северо-Западном регионе Российской Федерации, а также в ряде зарубежных стран. Отмечено, что поражение глаз влечет за собой снижение иммунофизиологического статуса и темпов роста в условиях аквакультуры, уменьшение количества полноценной рыбы, увеличение кормовых затрат и выпуск неполноценной рыбы в естественные водоемы с рыбоводных заводов, а иногда ее гибель. Представлена основная информация о факторах, способствующих развитию глазных патологий у лососевых. Проведен анализ лечебно-профилактических мероприятий, применяемых при поражении глаз, показана значимость дифференцированного подхода к данной проблеме в зависимости от действующего фактора.
Заключение. В мировой ветеринарной и ихтиопатологической практике проблема выпадения глаз у рыбы недостаточно изучена, количество исследований на эту тему ограниченно. В данном обзоре проанализированы и дифференцированно представлены основные факторы, способствующие развитию глазных патологий у лососевых, выявление которых позволит осуществить раннюю диагностику, определить и разработать меры профилактики или эффективные схемы лечения, что, в свою очередь, приведет к сохранению здоровья рыб, повышению продуктивности рыбоводных предприятий и снижению экономических потерь.
Введение. Глобальное распространение африканской чумы свиней, смертельно опасного вирусного геморрагического заболевания домашних свиней и диких кабанов, диктует необходимость применения эффективных мер предупреждения и раннего выявления вспышек. Контроль численности популяции, а также поиск туш диких кабанов, погибших от африканской чумы свиней и являющихся источником передачи вируса, считаются приоритетными мерами в управлении заболеванием в дикой природе.
Цель исследования. Обобщение имеющихся в настоящее время знаний о передовых технологиях применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) в условиях дикой природы в сочетании с методами искусственного интеллекта. Материалы и методы. При выполнении работы применялись аналитические методы исследований с использованием баз данных PubMed, Springer, Wiley Online Library, Google Scholar, CrossRef, РИНЦ, еLIBRARY, CyberLeninka.
Результаты. В данном обзоре рассматривается возможность применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) и искусственного интеллекта (нейронных сетей) для обнаружения диких кабанов и их останков в контексте борьбы с африканской чумой свиней. Подробно обсуждается роль диких кабанов в распространении заболевания и необходимость контроля их популяции, значение своевременного удаления трупов кабанов, при этом подчеркивается важность использования современных технологий для учета численности и плотности популяции дикого кабана. Проанализирована информация о применении дронов, оснащенных различными техническими средствами, при изучении популяций крупных видов животных в условиях дикой природы, отмечены преимущества и особенности использования беспилотных летательных аппаратов. Также обобщен опыт применения нейронных сетей в контексте автоматической обработки полученных с помощью дронов изображений животных.
Заключение. Интеграция беспилотных летательных аппаратов и искусственного интеллекта, вероятно, может стать ключевым инструментом в контроле популяции дикого кабана и быстром обнаружении туш кабанов, погибших вследствие африканской чумы свиней, что в целом позволит повысить эффективность мер, направленных на борьбу с данным заболеванием.
Введение. Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС), вызываемый вирусом из семейства Arteriviridae, является одной из наиболее экономически значимых болезней свиней во многих странах мира. Основные проявления заболевания включают репродуктивную дисфункцию у свиноматок, которая проявляется абортами на поздних сроках беременности, ранними или отсроченными опоросами, рождением слабых или нежизнеспособных поросят, нерегулярным эструсом; реже сообщается о патологиях на ранних и средних сроках беременности. У поросят и откормочных свиней наблюдается респираторный дистресс-синдром: кашель, чихание, одышка, задержка роста. Кроме того, заражение вирусом РРСС приводит к снижению респираторного иммунитета, что делает инфицированных свиней более восприимчивыми к вторичным инфекциям и повышает смертность среди поголовья. В настоящем обзоре представлена актуальная информация о текущем состоянии лабораторной диагностики и специфической профилактики РРСС, а также рассмотрены перспективные биотехнологические платформы для конструирования вакцин нового поколения.
Цель исследования. Рассмотреть и обобщить современные подходы к диагностике и профилактике репродуктивно-респираторного синдрома свиней.
Материалы и методы. Материалом для аналитического исследования послужили научные публикации зарубежных и отечественных авторов.
Результаты. Приведена нозологическая характеристика заболевания, рассмотрены особенности клинических проявлений, эпизоотологии, организации генома возбудителя. Описаны и обсуждены применяемые в ветеринарной практике классические и современные методы лабораторной диагностики, а также коммерчески доступные препараты для специфической профилактики РРСС и перспективные биотехнологические платформы для создания вакцин нового поколения, которые позволят достичь оптимального баланса между безопасностью и эффективностью. На текущем этапе изучения патогенеза РРСС существуют три основные проблемы в разработке вакцин: недостаточность сведений о механизмах иммунной защиты, способность вируса индуцировать негативные регуляторные сигналы для иммунной системы и значительная антигенная изменчивость возбудителя.
Заключение. Штаммы вируса РРСС демонстрируют значительную генетическую и антигенную гетерогенность и часто подвергаются рекомбинациям, что усугубляет проблемы эпизоотологии, профилактики и контроля заболевания. Дальнейшее углубленное изучение особенностей иммунного ответа организма-хозяина, а также идентификация Т- и B-клеточных эпитопов в структуре возбудителя позволит обеспечить рациональный дизайн генно-инженерных вакцин.
Издательство
- Издательство
- ФГБУ «ВНИИЗЖ»
- Регион
- Россия, Владимир
- Почтовый адрес
- Россия, 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец
- Юр. адрес
- 600901, ВЛАДИМИРСКАЯ ОБЛАСТЬ, Г. ВЛАДИМИР, МКР ЮРЬЕВЕЦ, МКР. ЮРЬЕВЕЦ
- ФИО
- Рыбин Роман Николаевич (Руководитель)
- E-mail адрес
- arriah@fsvps.gov.ru
- Контактный телефон
- +7 (903) 8991501
- Сайт
- https://arriah.ru